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WB 實驗方案詳解

發(fā)布時間:2024-06-22 16:47:51來源:

一、實驗簡介:

  Western blot是一種分子生物學(xué)實驗技術(shù),通過 SDS-PAGE 凝膠電泳將蛋白按照分子量大小分離,然后利用特異性抗體標(biāo)記這些蛋白。在免疫檢測中,通常使用硝酸纖維素或 PVDF(聚偏二氟乙烯)膜作為傳遞介質(zhì)。將凝膠緊貼膜后,通過電流作用使蛋白從凝膠遷移到膜上。接著使用特異性抗體進(jìn)行進(jìn)一步處理,通過次級抗體和檢測試劑使膜顯色,從而檢測目標(biāo)蛋白。Western blot技術(shù)在生命科學(xué)研究中被廣泛應(yīng)用,能夠檢測蛋白的表達(dá)和定量,幫助科研人員更好地研究蛋白的結(jié)構(gòu)和功能。

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二、實驗步驟

1、處理樣品前準(zhǔn)備:

  (1)將培養(yǎng)皿或培養(yǎng)瓶放在冰上,用冰冷的 PBS 緩沖液洗滌細(xì)胞。

  (2)吸干 PBS,然后添加適量的冰冷細(xì)胞裂解緩沖液(每 107 細(xì)胞/100 mm 培養(yǎng)皿/150 cm2 培養(yǎng)瓶加入 1 ml;每 5×106 細(xì)胞/60 mm 培養(yǎng)皿/75 cm2 培養(yǎng)瓶加入 0.5 ml)。

  (3)用預(yù)冷的塑料細(xì)胞刮板刮下貼壁細(xì)胞,將懸浮細(xì)胞液輕柔地轉(zhuǎn)移至預(yù)冷微量離心管中。

  (4)在 4 ℃ 下持續(xù)攪拌 30 分鐘。隨后進(jìn)行超聲處理。以探頭超聲儀為例,設(shè)定功率為 40W 或總功率的 40%,進(jìn)行多次打 3 秒停 3 秒的超聲處理,每次超聲 5-10 次。超聲后,裂解液將變得清澈且不再黏稠。加入Loading緩沖液后進(jìn)行煮樣。注意:跨膜蛋白不宜煮樣,直接加入Loading緩沖液;(若使用水浴超聲,則適當(dāng)延長時間,超聲 30 秒至 2 分鐘,全程保持在冰浴環(huán)境中)。

  (5)若無超聲儀,可使用帶注射器的針頭(20G-18G-16G)在冰上多次抽吸,直至裂解液變清澈。

2、解剖樣品前準(zhǔn)備:

  (1)使用干凈的器械在冰上解剖目標(biāo)組織。為防止蛋白酶的降解,最好在盡快完成解剖過程。

  (2)將解剖好的組織放入圓底離心管或 Eppendorf 管中,立即浸入液氮中進(jìn)行“速凍”。將樣本存儲在 -80°C 中備用,或者立即放在冰上進(jìn)行勻漿處理。對于約 5 mg 的組織,迅速向管中加入約 300 μL 裂解液,并使用電動勻漿器勻漿。使用 2 倍裂解液兩次沖洗刀片,每次使用 200 μL,然后在 4℃ 下(例如將回旋振蕩器放入冰箱中)持續(xù)振搖 2 小時。裂解液的體積應(yīng)根據(jù)組織總量來確定;蛋白提取物不宜過于稀釋,以免造成蛋白丟失,同時盡量減少樣本體積,以便于在凝膠上進(jìn)行上樣。最小濃度為 0.1 mg/mL,最佳濃度為 1-5 mg/mL。

  (3)在微型離心機(jī)中以 4℃ 和 12,000 rpm 的速度離心 20 分鐘。輕輕地從離心機(jī)中取出離心管放置在冰上。將上清液吸出并轉(zhuǎn)移到新的預(yù)冷離心管中,將沉淀廢棄。

3:上樣和電泳步驟:

  (1)將相等量的蛋白質(zhì)和分子量標(biāo)準(zhǔn)上樣到 SDS-PAGE 凝膠槽中。來自細(xì)胞裂解物或組織勻漿的總蛋白的上樣量通常為 20 - 30 μg,而純化蛋白的上樣量為 10 - 100 ng。

  (2)在設(shè)定電壓為 100 V 的條件下進(jìn)行電泳,通常需要 1 至 2 小時。根據(jù)蛋白的大小、儀器條件等因素,可能需要對電泳時間和電壓進(jìn)行一些優(yōu)化。

  (3)建議設(shè)定內(nèi)參對照。根據(jù)蛋白的類型,可以使用全蛋白內(nèi)參、核蛋白內(nèi)參、膜蛋白內(nèi)參以及不同亞細(xì)胞器的內(nèi)參,以確保電泳結(jié)果的準(zhǔn)確性

4:蛋白從凝膠轉(zhuǎn)移到膜:

  可以選擇硝酸纖維素或 PVDF 作為轉(zhuǎn)膜膜材料。對于 PVDF 膜,在轉(zhuǎn)膜之前用甲醇活化 PVDF 膜約 1 分鐘,然后用轉(zhuǎn)膜緩沖液沖洗 PVDF。轉(zhuǎn)膜的時間和電壓可能需要根據(jù)實驗條件進(jìn)行優(yōu)化,建議參考生產(chǎn)廠家的說明書進(jìn)行操作。在進(jìn)行封閉步驟之前,可以使用麗春紅染色法檢查蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)膜的效果。

  制備轉(zhuǎn)膜層的步驟如下:

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  5:抗體染色步驟:

  (1)使用5%封閉溶液在室溫下封閉膜 1 小時,或者在4℃下過夜進(jìn)行封閉。

  (2)使用適當(dāng)稀釋度的一抗在5%封閉溶液中在4℃過夜或在室溫下孵育2小時。

  (3)用TBST洗滌膜3次,每次5分鐘。

  (4)使用推薦稀釋度的標(biāo)記二抗在含有5%封閉緩沖液的TBST中在室溫孵育膜1小時。

  (5)用TBST洗滌膜3次,每次5分鐘,然后用TBS沖洗。

  (6)去除多余試劑,利用暗室顯影技術(shù)采集化學(xué)發(fā)光圖像,或者使用常規(guī)圖像掃描法采集比色檢測圖像。

標(biāo)簽: WB   WB實驗步驟   Western blot   WB實驗方案

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